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猪胸膜肺炎放线杆菌单克隆抗体的制备与鉴定
目的:建立抗血清1型猪胸膜肺炎放线杆菌(APP-1)脂多糖(LPS)的单克隆抗体杂交瘤细胞株,为今后建立该菌的分型诊断技术奠定基础.方法:腹腔注射APP-1标准株的甲醛固定抗原免疫BALB/c 小鼠,ELISA检测血清中LPS抗体滴度并选择值高的小鼠用于细胞融合,且于融合前3天加强免疫1 次.常规方法进行融合,HT、HAT 培养液选择培养融合后的细胞, ELISA检测细胞培养上清中的LPS抗体, 阳性杂交瘤细胞用有限稀释法克隆传代.结果:获得3 株稳定分泌抗APP-1 LPS抗原的单克隆抗体杂交瘤细胞株,其小鼠腹水单克隆抗体效价1∶ 16 000～1∶ 32 000.结论:已成功建立3 株稳定分泌抗APP-1 LPS抗原的单克隆抗体杂交瘤细胞株,其产生的单克隆抗体与呼吸道其它常见致病菌及APP-3,5,7,9,型无交叉反应.
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鼠疫F1单克隆抗体杂交瘤株建立过程中几个重要因素的探讨
自1975年K(O)hler及Milstein创建杂交瘤技术以来,使用该技术制备出抗各种抗原的单克隆抗体,品种不下万种,其中数百种已在医学和生物学各个领域得到广泛的应用[1,2].尽管杂交瘤技术是一门成熟的技术,但由于涉及细胞培养,其影响因素非常多[3].课题组就建立分泌抗鼠疫F1抗原单克隆抗体杂交瘤细胞株过程进行了分析和探讨,总结如下.
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鼠疫快速诊断技术及其应用研究
目的寻找和确定引起特异性不足的因素,实施科学的对策加以解决,真正实现鼠疫的快速诊断技术并以此为基础构建新一代的检测技术.方法 (1)研制高质量的鼠疫F1抗原的单克隆抗体,考虑到位点问题要求尽可能多的、针对不同位点的高效价瘤株,构建稳定的"抗体源";(2)利用获得的高效瘤株通过纯系小鼠生产抗体或用无蛋白细胞培基生产抗体;(3)对抗体进行纯化并使其达到"免疫纯水平"并建立提取、纯化工艺,终建立稳定的低成本的无交叉"抗体源";(4)纯化抗原至"免疫纯水平"或"电泳纯水平",建立提取、纯化工艺,终建立稳定低成本的无交叉"抗原源";(5)对新一代快速检测技术进行实验室和现场评价,对特异性即实验的准确性做出评价.结果 (1)确定了影响鼠疫免疫学诊断技术特别是间接红细胞凝集试验(IHA及RIHA)特异性不足的两大因素:a.技术落后,试验中采用的载体不适导致了相当数量的假性凝集;b.技术方法中使用的抗原、抗体严重不纯,尤其是制备抗体时免疫动物"自身抗体"的掺入是造成交叉反应更重要的因素;(2)研制并开发出分泌抗鼠疫F1单克隆抗体(F1-McAb)的杂交瘤株164株,并从其中筛选出针对不同位点的高效瘤株6株,经活性鉴定及配对试验形成了4个组合,具高效价和高活性;(3)使用制备电泳技术将鼠疫F1抗原提纯至电泳纯水平;(4)将鼠疫F1-McAb提纯至免疫纯水平;(5)引进、消化了具有先进水平的胶体金标免疫层析技术;(6)使用电泳纯的鼠疫F1抗原及免疫纯的鼠疫F1-McAb构建了能自人和动物血液中直接检测鼠疫特异抗体的金标免疫层析技术(GICA)和能自人和动物脏器或穿剌物中直接检测鼠疫F1抗原或鼠疫病原的反向金标免疫层析技术(RGICA);(7)由于采用了纯化的抗原、抗体,提高了标记效果,其敏感性超过IHA和RIHA,阳性检出率在排除了假阳性和交叉反应后依然高出血凝约5%左右;(8)上述两项技术实验室内经44株非鼠疫菌抗血清和90株非鼠疫菌交叉测定、中和试验以及蛋白印迹鉴定(Western blotting)均证实反应特异,基本消除了传统技术存在的非特异反应;(9)经4省(区)不同宿主动物3 168份(其中血清材料2 265份,脏器材料903份)现场标本验证,与实验室取得了一致的结论.结论胶体金免疫层析测试条较好地解决了特异性之难题,有效地避免了其它病原微生物导致的以及酸、碱和嗜异性凝集素、低温条件等造成的假性凝集,同时也有效地消除了由于抗原、抗体不纯,特别是实验动物自然感染其它病原产生的"自身抗体"导致的交叉反应,该技术操作简便,特别适合现场和边远地区应用,对比传统技术该法不需专业性操作,不需仪器设备,因而乡村医生可自行进行操作并做出诊断.
